▎使用方法
v 染色
常规大小凝胶在蛋白电泳后，用去离子水稍微润洗一下(润洗步骤可省略)，小心倒掉液体，加入约20-30ml超快染色液，染色5-60分钟。去除染色液后(可回收后重复使用2-3次)，用去离子水稍微润洗一下(润洗步骤可省略)，即可进行拍照。通常染色5-10分钟即可观察到良好的蛋白染色条带，并可以进行拍照。
注1：加入适量的考马斯亮蓝超快染色液(免脱色) (每块大小约7×8cm的凝胶需使用约20-30ml)，使染色液能盖住凝胶，且液面至少高出三个胶的厚度为宜，室温(20-25ºC)在翘板摇床或水平摇床上进行染色。
注2：在室温的染色时间宜为5-60分钟，实际染色时间可以根据所需的染色效果自行调整。染色至能看到清晰的目标蛋白条带后，弃染色液，加入适量的去离子水，洗去残留的染色液，停止染色反应，然后即可拍照记录。如果希望获得没有背景的凝胶图片，可以进行后续用水漂洗的脱色步骤。通常染色5分钟就可以肉眼观察到约10ng的蛋白条带，染色10分钟就可以肉眼观察到约5ng 的蛋白条带。凝胶的合适染色时间和凝胶厚度以及蛋白上样量有关，较薄的凝胶染色时间可以略短，较厚的凝胶染色时间可以略长，具体以是否达到预期的染色效果为准。简单查看蛋白染色效果时染色2-5分钟就可以了。通常推荐染色5-60分钟即可，但如果没有停止染色并染色更长时间也是可以的，后续适当用水进行背景脱色即可。
注3：本染色液可以酌情重复使用2-3次，但染色效果会比第一次略差，且染色速度会逐渐变慢。具体可以重复使用的次数和每次考马斯亮蓝超快染色液(免脱色)使用时凝胶中的总蛋白量以及凝胶厚度有关，总蛋白量越少凝胶越薄，可以重复使用的次数越多。
v 染色
如需进一步降低染色背景，可加入适量去离子水，在摇床上摇动脱色5-30分钟。通常不脱色即可获得很低的染色背景，而用去离子水脱色30分钟即可获得极低的背景。
注：上述的洗涤、染色和脱色时间均适用于0.75-1.5mm厚的凝胶，对于更厚的凝胶，染色和脱色的时间均须适当延长。
▎注意事项
1. 使用后，请及时密封以避免乙醇挥发导致失效。
2. 请根据凝胶面积和厚度，选择合适的染液体积和染色时间。
3. 本产品可以重复利用至少3次，随使用次数的增加，染色速度会略微下降，可以延长染色时间，灵敏度不受影响。
4. 本产品通过吸附去垢剂提升染色效率，随着使用次数增加，可能会产生银色絮状或微量沉淀，属于正常现象，可以摇晃混匀或37°C水浴溶解后使用。
5. 使用本试剂盒时注意有效防护，为了您的安全和健康，请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
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