▎实验流程 :
1. 制备线性化载体
选择合适的克隆位点,并对载体进行线性化。尽量选择无重复序列且载体克隆位点上下游20bp区域内GC含量在40%-60%之间的位点进行克隆。选择载体线性化方式限制性内切酶酶切消化或反向PCR扩增。
- 酶切制备线性化载体时,推荐使用双酶切线性化, 若使用单酶切线性化,请适当延长酶切时间以减少环状质粒残留,降低转化背景。
- 反向PCR扩增制备线性化载体,推荐使用高保真DNA聚合酶进行载体扩增,以减少扩增突变的引入。PCR产物需要进行胶回收,减少环状质粒环状DNA模板的残留。
2. 制备插入片段
通过在插入片段正、反向引物5‘ 端引入15-25bp线性化载体末端同源序列,使得插入片段PCR产物5’ 端和3‘ 端的末端分别带有与线性化载体的两个末端对应的完全一致的序列。使用高保真PCR Mix完成扩增,获得PCR产物后进行琼脂糖凝胶电泳分析,并回收正确的产物片段。
5’-上游载体末端同源序列+酶切位点(保留或删除)+基因特异性正向扩增引物序列-3’
3’-基因特异性反向扩增引物序列+酶切位点(保留或删除)+下游载体末端同源序列-5’。
3. 线性化载体与插入片段浓度测定
使用NanoDrop或Qubit检测线性化载体和插入片段的浓度。
4. 配制重组反应体系
1)线性化载体和插入片段使用量计算
载体与插入片段摩尔比为1:2 ~ 1:3;当插入片段长度大于克隆载体时,将插入片段当作克隆载体,克隆载体当作插入片段计算。
2)在冰上配制反应体系:
试剂组分 | 实验组 | 阴性对照 | 阳性对照 |
线性化载体 插入片段 2 x LeanV One Step Cloning Mix DNase-free Water | X Y 5 μL up to 10 μL | X 0 0 up to 10 μL | pUC19 Control Vector, linearized 1μL 700bp Control Insert 1 μL 5 μL up to 10 μL |
3) 使用移液器轻轻吸打混匀并瞬时离心。
4) 50℃反应20min, 4℃维持或取出后置于冰上冷却。
5) 重组反应转化、涂板,具体方法参照感受态细胞的说明书。
▎注意事项 :
1. 请于使用前确保产品完全解冻,彻底混匀后短暂离心,置于冰上备用。
2. 反复冻融会影响产品的性能。
3. 为了提高扩增成功率和产量,请使用高质量的模板。
4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。