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LeanV 超滤离心管

货号:LV05 | LV4 | LV15
LeanV 超滤离心管可快速高效实现生物样本的浓缩与纯化,过滤孔径为10kd 30kd 50kd 100kd, 目前有 0.5mL、4mL和15mL三种规格可提供。独特的竖式设计及最大化过滤面积能提供快速的样本处理和较高的样本回收率(通常大于 90%稀薄的初始溶液),同时保持温和的浓缩环境以保持蛋白的活性和构象。竖式设计将溶质极化和之后造成的滤膜结垢降至最低,过滤装置中的物理止滤点防止过滤器旋转过度使样本干燥和造成样本损失,其中0.5mL超滤离心管通过反向旋转快捷操作高效稳定回收浓缩样品。超滤离心管采用了PES膜,该膜的蛋白质和核酸结合率非常低。

价 格 ¥1800

LeanV 超滤离心管

¥1800

LV05

¥ 2400

LV4

¥ 2200

LV15

¥ 1800

产品规格 请选择

产品描述 使用方法 FAQ 说明书下载

▎产品简介 :


LeanV 超滤离心管可快速高效实现生物样本的浓缩与纯化,过滤孔径为10kd 30kd  50kd 100kd, 目前有 0.5mL、4mL和15mL三种规格可提供。独特的竖式设计及最大化过滤面积能提供快速的样本处理和较高的样本回收率(通常大于 90%稀薄的初始溶液),同时保持温和的浓缩环境以保持蛋白的活性和构象。竖式设计将溶质极化和之后造成的滤膜结垢降至最低,过滤装置中的物理止滤点防止过滤器旋转过度使样本干燥和造成样本损失,其中0.5mL超滤离心管通过反向旋转快捷操作高效稳定回收浓缩样品。超滤离心管采用了PES膜,该膜的蛋白质和核酸结合率非常低。


▎产品结构 :


▎产品应用 :

1. 超滤

  • 生物分子混合物粗分离浓缩和脱盐蛋白质、核酸缓冲液置换或色谱组分除盐
  • 从培养基中收获生物分子
  • 病毒浓缩或分离
  • 生物分子混合物粗分离
  • 细胞裂解物中碎片和颗粒去除

2. 微滤

  • 从琼脂糖凝胶中分离DNA
  • 从聚丙烯酰胺凝胶中分离蛋白质、寡核苷酸和RNA
  • HPLC分析前的样本澄清
  • 过滤生物样本
  • 收集和清洗处理过的颗粒或珠子


▎产品特点 :


  • 截留精度高,低蛋白吸附,高回收率>90%
  • 双面垂直膜设计,防止膜堵塞、超低滞留体积、高离心效率
  • 卓越的生物相容性和安全性,萃取物极少,经USP87认证
  • 防滤干锁止设计,避免过度离心对样本损伤,确保实验结果稳定可靠
  • 支持OEM定制


▎产品技术参数 :

▎储存条件 :室温干燥储存。




▎操作说明 :

预清洗

本超滤离心管的超滤孔径PES膜含有微量的甘油及保护剂,为避免干扰分析,使用前通过过滤去离子水(4mL超滤离心管加 4mL,15mL超滤离心管加15mL,0.5mL超滤离心管加0.5mL)或缓冲液通过膜并重复进行来去除它们。如果需要进一步冲洗,从 0.05mol/L NaOH 开始并重复此过程。超滤离心管一旦润湿,就需要保持湿润状态,直到使用完毕。



0.5mL超滤离心管使用方法


4mL和15mL超滤离心管使用说明

1. 取下盖子,将样品移入样品槽中(4mL超滤离心管不超过4.5mL,15mL超滤离心管不超过15mL),并盖上盖子以防止离心过程中蒸发。 

2. 将超滤离心管放入可容纳 15 /50mL锥形管的离心机中。 始终使用另一个含有等量样品体积的超滤离心管来平衡转子。 

3. 以推荐的力量旋转设备所需的时间。超滤:4mL超滤离心管以 1000至 6000xg 的速度旋转,通常旋转10至60分钟,以达到所需的浓缩体积;15mL超滤离心管以 1000至 5000xg的速度旋转,通常旋转10至60分钟,以达到所需的浓缩体积。微滤:4mL微滤管以2000至10000xg的速度旋转;以2000至6000xg的速度旋转。建议为每个应用确定旋转时间和重力。 

4. 如要回收浓缩后的溶质,在过滤装置底部插入一个移液管,然后左右摇摆着吸取样本,以确保完全回收。超滤液可以保存在离心管中。 

说明: 要想达到理想回收,离心后请立即取走浓缩后样本。


0.5ml超滤离心管使用说明

1. 取下盖子,将不超过0.5 mL的样品移入过滤器中,盖上盖子以防止离心过程中溶液蒸发。 

2. 将超滤离心管放入可容纳1.5 mL或2.0 mL离心管的离心机中。以不大于14000g的离心力离心10至30分钟,以达到所需的浓缩体积。建议通过预实验为每个应用确定合适的离心时间和离心力。注意:离心时请注意离心机配平! 

3. 如要回收浓缩后的溶液,请将过滤器倒置在另一个干净的离心管中,放入离心机,将敞口盖对准转子中心,并注意配平。以1000g的离心力离心1至2分钟,可将浓缩液从过滤器中转移到离心管中。滤出液和浓缩液均可保存在离心管中。


非特异性吸附

PES膜具有低生物分子结合特性,并且有出色的生物和化学耐受性。但在纯化微克或纳克级别的蛋白质时,设备组件的吸附仍需特别关注。即使本超滤离心管中使用的材料为低吸附性塑料,但在浓缩或分离高“粘性”的蛋白质和生物分子时也可能发生吸附。预处理超滤离心管可以进一步减少过滤器的非特异性吸附。具体操作如下:

1. 用 10% 甘油(4mL超滤离心管加4mL,15mL超滤离心管加15mL,0.5mL超滤离心管加0.5mL)填充样品容器。 

2. 室温浸泡过夜。 

3. 用去离子水填充超滤离心管,静置1至2分钟后弃去管内液体,重复1至2次。 

4. 用去离子水(4mL超滤离心管加4mL,15mL超滤离心管加15mL,0.5mL超滤离心管加0.5mL)填充样品容器并旋转重复,使去离子水通过滤膜,重复1~2次。


除盐或渗滤

1. 将样品浓缩至少十倍(例如将 4 mL 浓缩至 0.4 mL,将 15 mL 浓缩至 1.5 mL,将 0.5 mL 浓缩至 0.05 mL)。 

2.用交换缓冲液复溶并再浓缩十倍。 3.重复此程序 3 到 5 次以去除 95 到 99% 的盐或缓冲液。



▎注意事项 :


1. 4mL/15mL/0.5mL超滤离心管为未消毒的一次性产品,若发现破损,请勿使用。 

2. 4mL/15mL/0.5mL超滤离心管仅限科研使用,不用于体外诊断。 

3. 为确保样本适配性,初次使用建议进行预实验,测试回收及截留效率。

4. 本超滤离心管不适用高温高压灭菌处理,推荐70%乙醇浸泡30min灭菌处理,其它灭菌方式存在不可控风险。

5. 本超滤离心管应匹配锥形底离心机转子使用(圆底转子需加转换垫子),避免离心管底部因受力不均变形。



 PartI 产品知识

Q: 超滤离心管都有哪些用途?

A: 超滤离心管可以用于生物样品(蛋白,核酸,病毒等)的浓缩,脱盐,或者更换缓冲液。

Q: 超滤离心管有哪些规格?

A: 超滤离心管提供三种样本体积的规格:0.5 mL, 4 mL & 15 mL,每种 规格都含有5种标称截留分子量:5kDa,10kDa, 30kDa,50kDa,100kDa。如果处理更大体积的样本, 欢迎咨询技术支持。

Q: 超滤离心管的膜材质是什么?

A: 超滤离心管的膜材质为PES膜。

Q: 超滤离心管的化学相容性如何?

A: 超滤离心管适用于一般的水溶液或生物学样品,管殊样本的化学相容性请参考本文件中化学兼容性表格。

Q: 我可以重复使用超滤离心管么?

A: 所有的超滤离心管都是一次性的,不推荐重复使用。

Q: 超滤离心管可耐受的pH值范围是多少?

A: 对于PES超滤膜,说明书中所推荐的pH范围为1-14。具体酸碱类型及浓度请参考说明书中的化学兼容性表。


PartⅡ: 产品选择

Q: 我该如何选择合适的装置用于蛋白的浓缩?

A: 一般我们推荐选择的超滤离心管的标称分子量为目标蛋白的1/3以内。

Q: 如果要用超滤的方法分离两种蛋白,那么这两个蛋白的大小需要相差多少?

A: 按照经验,我们推荐两个蛋白的分子量要相差一个数量级(10倍)。

Q: 超滤离心管可以用于病毒浓缩么?

A: 可以。对于慢病毒,我们推荐100kDa MWCO;对于腺病毒,推荐 50kDa MWCO。

Q: 超滤离心管可以用于纳米颗粒纯化与浓缩么?

A: 可以。虽然我们没有内部数据支持这一应用,但是有很多客户超滤离心管用于纳米颗粒的浓缩及纯化,并获得很好的结果。超滤离心管的标称分子量对应的膜孔径范围请参考右图:

Q: 超滤离心管可以用于外泌小体的纯化与浓缩吗?

A: 可以。外泌小体的直径在30-100nm左右,推荐50-100kDa进行浓缩


Part Ⅲ:实验操作

Q: 如果使用超滤离心管,要配什么样的离心转子,最大离心力是多少?

A: 具体参数请参考下表:


Q: 处理后样品怎样收集?

A: 两种方式:移液枪转移和反转离心

1. 对于15 mL和4 mL的超滤离心管,可以直接通过移液枪收集处理后样品 

2. 对于0.5 mL的超滤离心管,可以通过反转离心的方式收集处理后样品:将有浓缩样品的超滤离心管(内管)倒置于新的离心管中后,低速离心(1,000 g)后将样品重新离心到新离心管中(如下图步骤所示)


Q: 超滤离心管的样品会因为离心时间过长而变干么?

A: 不会,因为有死体积设计,总会有溶液残留在滤管中。

Q: 超滤离心管可以用酒精消毒灭菌么?

A: 装置与70%乙醇是兼容的,但是我们对灭菌处理的具体方法没有做相关的测试,所以无法提供更进一步的参考信息。

Q: 超滤装置是否可以用于高压灭菌?

A: 不可以。

Q: 是否提供无热源的超滤装置?

A: 我们提供的超滤装置均非无热源的,即使是无菌装置也可能包含热源。

Q: 超滤离心管是否不含RNA酶?

A: 我们不保证超滤离心管不包含RNA酶,建议您可以用0.1% DEPC在37度浸泡2小时,以完全灭活RNA酶。残留的DEPC可以用超纯水洗涤除去。

Q: 说明书中推荐在室温下进行离心,考虑到蛋白的稳定性,我是否可以在4℃进行离心?

A: 可以,但是低温会增加蛋白样品的粘性,导致流速减慢,建议可将离心时间延长到原来的 1.5倍。

Q: 如何对超滤离心管进行去除内毒素的处理?

A: 我们提供的超滤离心管是没有经过去内毒素处理的,同时由于内毒素通常以多聚体的形式存在, 大小在10-1000kDa之间不等,在超滤的过程中是无法去除的。

Part Ⅳ:结果分析

Q: 用超滤离心管去除去污剂是有什么需要注意的吗?

A: 去污剂因其独特的性质,当浓度大于临界微团浓度(Critical Micelle Concentration, CMC)时,去污剂分子会聚集形成微团分子而改变分子构象,这有可能会影响去污剂的去除效果

Q: 我的蛋白在浓缩时出现了沉淀为什么?

A: 蛋白如果浓缩过快或者过度浓缩都有可能引起蛋白沉淀。我们建议蛋白浓缩后的最终浓度不超过20mg/ml. 对于对浓缩速度敏感而容易沉淀的蛋白,我们建议的改进方法是:

1离心力降为推荐离心力的30%-50%。 

2改选择下一级过滤装置(如原本选用10kDa,此时可以选择30kDa) 3在浓缩过程中,取出超滤离心管,用枪头反复吹吸几次。

Q: 浓缩后我发现浓缩液中没有目的蛋白,可能的原因是?

A: 首先,超滤离心管的最低起始蛋白浓度为25ug/ml. 请确保您的样本的起始浓度大于这个浓度。 其次,如果问题仍然出现。请不要丢弃您的样本滤过液,以做下一步分析:

1如果您的样本在滤过液中,那么请排查:

  • 您是否选择了合适截留分子量的超滤离心管(目的蛋白分子量的1/2或者1/3)?
  • 使用的离心力是否是在最高范围内?如果您使用的是rpm,需根据离心半径,换算成相应离心力离心机最近是否有校准过?
  • 您是否首次尝试这个蛋白?如果能确保你用同样的超滤离心管对其他蛋白成功操作的话, 那么有可能是您的目的蛋白的原因。有时蛋白会因其本身的一些特性(构象差异)而影响浓缩效果,建议选用上一分子量级别的超滤离心管(如原本选用30kDa,此时可以选择 10kDa)。

2如果您的样本也不在滤过液中:

  • 您的样本起始蛋白浓度是否大于25ug/mL?
  • 您用来确定样本浓度的方法是什么?是否可信?
  • 您的目的蛋白是不是沉淀了?如果是,具体解决方法请参考上面的关于蛋白沉淀的 FAQ


Q: 我用浓缩后的蛋白做下游分析时发现有干扰,可能原因?

A: 超滤离心管中的超滤膜含有微量甘油。如果此材料干扰分析,可用缓冲液或超纯水预清洗。如果干扰仍然存在,用0.1 mol/L NaOH清洗,然后用缓冲液或超纯水再次清洗后甩干

Q: 有时候我用超滤离心管连水都离不下来,可能原因?

A: 超滤离心管中的超滤膜含有微量甘油。如果出现这种情况,先用0.1 mol/L NaOH清洗再离心。最后用缓冲液或超纯水再次清洗后甩干。清洗后的滤膜应立即使用, 如暂时不用,请保持润湿状态,避免重新干燥。

Q: 使用超滤离心管对蛋白进行浓缩的过程中怀疑目的蛋白和膜之间可能存在非特异性吸附,如何 改善这一现象?

A: 超滤离心管使用的是PES膜材质,拥有低蛋白吸附能力。但是对于一些疏水性蛋 白或非极性蛋白,它们和膜的非特异吸附可能会增强,对于这种情况,客户可以尝试在实验 前对超滤离心管进行封闭处理,详细步骤可联系技术支持。

同时也可建议客户通过减小膜面积来降低非特异性吸附。







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产品描述

▎产品简介 :


LeanV 超滤离心管可快速高效实现生物样本的浓缩与纯化,过滤孔径为10kd 30kd  50kd 100kd, 目前有 0.5mL、4mL和15mL三种规格可提供。独特的竖式设计及最大化过滤面积能提供快速的样本处理和较高的样本回收率(通常大于 90%稀薄的初始溶液),同时保持温和的浓缩环境以保持蛋白的活性和构象。竖式设计将溶质极化和之后造成的滤膜结垢降至最低,过滤装置中的物理止滤点防止过滤器旋转过度使样本干燥和造成样本损失,其中0.5mL超滤离心管通过反向旋转快捷操作高效稳定回收浓缩样品。超滤离心管采用了PES膜,该膜的蛋白质和核酸结合率非常低。


▎产品结构 :


▎产品应用 :

1. 超滤

  • 生物分子混合物粗分离浓缩和脱盐蛋白质、核酸缓冲液置换或色谱组分除盐
  • 从培养基中收获生物分子
  • 病毒浓缩或分离
  • 生物分子混合物粗分离
  • 细胞裂解物中碎片和颗粒去除

2. 微滤

  • 从琼脂糖凝胶中分离DNA
  • 从聚丙烯酰胺凝胶中分离蛋白质、寡核苷酸和RNA
  • HPLC分析前的样本澄清
  • 过滤生物样本
  • 收集和清洗处理过的颗粒或珠子


▎产品特点 :


  • 截留精度高,低蛋白吸附,高回收率>90%
  • 双面垂直膜设计,防止膜堵塞、超低滞留体积、高离心效率
  • 卓越的生物相容性和安全性,萃取物极少,经USP87认证
  • 防滤干锁止设计,避免过度离心对样本损伤,确保实验结果稳定可靠
  • 支持OEM定制


▎产品技术参数 :

▎储存条件 :室温干燥储存。




使用方法

▎操作说明 :

预清洗

本超滤离心管的超滤孔径PES膜含有微量的甘油及保护剂,为避免干扰分析,使用前通过过滤去离子水(4mL超滤离心管加 4mL,15mL超滤离心管加15mL,0.5mL超滤离心管加0.5mL)或缓冲液通过膜并重复进行来去除它们。如果需要进一步冲洗,从 0.05mol/L NaOH 开始并重复此过程。超滤离心管一旦润湿,就需要保持湿润状态,直到使用完毕。



0.5mL超滤离心管使用方法


4mL和15mL超滤离心管使用说明

1. 取下盖子,将样品移入样品槽中(4mL超滤离心管不超过4.5mL,15mL超滤离心管不超过15mL),并盖上盖子以防止离心过程中蒸发。 

2. 将超滤离心管放入可容纳 15 /50mL锥形管的离心机中。 始终使用另一个含有等量样品体积的超滤离心管来平衡转子。 

3. 以推荐的力量旋转设备所需的时间。超滤:4mL超滤离心管以 1000至 6000xg 的速度旋转,通常旋转10至60分钟,以达到所需的浓缩体积;15mL超滤离心管以 1000至 5000xg的速度旋转,通常旋转10至60分钟,以达到所需的浓缩体积。微滤:4mL微滤管以2000至10000xg的速度旋转;以2000至6000xg的速度旋转。建议为每个应用确定旋转时间和重力。 

4. 如要回收浓缩后的溶质,在过滤装置底部插入一个移液管,然后左右摇摆着吸取样本,以确保完全回收。超滤液可以保存在离心管中。 

说明: 要想达到理想回收,离心后请立即取走浓缩后样本。


0.5ml超滤离心管使用说明

1. 取下盖子,将不超过0.5 mL的样品移入过滤器中,盖上盖子以防止离心过程中溶液蒸发。 

2. 将超滤离心管放入可容纳1.5 mL或2.0 mL离心管的离心机中。以不大于14000g的离心力离心10至30分钟,以达到所需的浓缩体积。建议通过预实验为每个应用确定合适的离心时间和离心力。注意:离心时请注意离心机配平! 

3. 如要回收浓缩后的溶液,请将过滤器倒置在另一个干净的离心管中,放入离心机,将敞口盖对准转子中心,并注意配平。以1000g的离心力离心1至2分钟,可将浓缩液从过滤器中转移到离心管中。滤出液和浓缩液均可保存在离心管中。


非特异性吸附

PES膜具有低生物分子结合特性,并且有出色的生物和化学耐受性。但在纯化微克或纳克级别的蛋白质时,设备组件的吸附仍需特别关注。即使本超滤离心管中使用的材料为低吸附性塑料,但在浓缩或分离高“粘性”的蛋白质和生物分子时也可能发生吸附。预处理超滤离心管可以进一步减少过滤器的非特异性吸附。具体操作如下:

1. 用 10% 甘油(4mL超滤离心管加4mL,15mL超滤离心管加15mL,0.5mL超滤离心管加0.5mL)填充样品容器。 

2. 室温浸泡过夜。 

3. 用去离子水填充超滤离心管,静置1至2分钟后弃去管内液体,重复1至2次。 

4. 用去离子水(4mL超滤离心管加4mL,15mL超滤离心管加15mL,0.5mL超滤离心管加0.5mL)填充样品容器并旋转重复,使去离子水通过滤膜,重复1~2次。


除盐或渗滤

1. 将样品浓缩至少十倍(例如将 4 mL 浓缩至 0.4 mL,将 15 mL 浓缩至 1.5 mL,将 0.5 mL 浓缩至 0.05 mL)。 

2.用交换缓冲液复溶并再浓缩十倍。 3.重复此程序 3 到 5 次以去除 95 到 99% 的盐或缓冲液。



▎注意事项 :


1. 4mL/15mL/0.5mL超滤离心管为未消毒的一次性产品,若发现破损,请勿使用。 

2. 4mL/15mL/0.5mL超滤离心管仅限科研使用,不用于体外诊断。 

3. 为确保样本适配性,初次使用建议进行预实验,测试回收及截留效率。

4. 本超滤离心管不适用高温高压灭菌处理,推荐70%乙醇浸泡30min灭菌处理,其它灭菌方式存在不可控风险。

5. 本超滤离心管应匹配锥形底离心机转子使用(圆底转子需加转换垫子),避免离心管底部因受力不均变形。



FAQ

 PartI 产品知识

Q: 超滤离心管都有哪些用途?

A: 超滤离心管可以用于生物样品(蛋白,核酸,病毒等)的浓缩,脱盐,或者更换缓冲液。

Q: 超滤离心管有哪些规格?

A: 超滤离心管提供三种样本体积的规格:0.5 mL, 4 mL & 15 mL,每种 规格都含有5种标称截留分子量:5kDa,10kDa, 30kDa,50kDa,100kDa。如果处理更大体积的样本, 欢迎咨询技术支持。

Q: 超滤离心管的膜材质是什么?

A: 超滤离心管的膜材质为PES膜。

Q: 超滤离心管的化学相容性如何?

A: 超滤离心管适用于一般的水溶液或生物学样品,管殊样本的化学相容性请参考本文件中化学兼容性表格。

Q: 我可以重复使用超滤离心管么?

A: 所有的超滤离心管都是一次性的,不推荐重复使用。

Q: 超滤离心管可耐受的pH值范围是多少?

A: 对于PES超滤膜,说明书中所推荐的pH范围为1-14。具体酸碱类型及浓度请参考说明书中的化学兼容性表。


PartⅡ: 产品选择

Q: 我该如何选择合适的装置用于蛋白的浓缩?

A: 一般我们推荐选择的超滤离心管的标称分子量为目标蛋白的1/3以内。

Q: 如果要用超滤的方法分离两种蛋白,那么这两个蛋白的大小需要相差多少?

A: 按照经验,我们推荐两个蛋白的分子量要相差一个数量级(10倍)。

Q: 超滤离心管可以用于病毒浓缩么?

A: 可以。对于慢病毒,我们推荐100kDa MWCO;对于腺病毒,推荐 50kDa MWCO。

Q: 超滤离心管可以用于纳米颗粒纯化与浓缩么?

A: 可以。虽然我们没有内部数据支持这一应用,但是有很多客户超滤离心管用于纳米颗粒的浓缩及纯化,并获得很好的结果。超滤离心管的标称分子量对应的膜孔径范围请参考右图:

Q: 超滤离心管可以用于外泌小体的纯化与浓缩吗?

A: 可以。外泌小体的直径在30-100nm左右,推荐50-100kDa进行浓缩


Part Ⅲ:实验操作

Q: 如果使用超滤离心管,要配什么样的离心转子,最大离心力是多少?

A: 具体参数请参考下表:


Q: 处理后样品怎样收集?

A: 两种方式:移液枪转移和反转离心

1. 对于15 mL和4 mL的超滤离心管,可以直接通过移液枪收集处理后样品 

2. 对于0.5 mL的超滤离心管,可以通过反转离心的方式收集处理后样品:将有浓缩样品的超滤离心管(内管)倒置于新的离心管中后,低速离心(1,000 g)后将样品重新离心到新离心管中(如下图步骤所示)


Q: 超滤离心管的样品会因为离心时间过长而变干么?

A: 不会,因为有死体积设计,总会有溶液残留在滤管中。

Q: 超滤离心管可以用酒精消毒灭菌么?

A: 装置与70%乙醇是兼容的,但是我们对灭菌处理的具体方法没有做相关的测试,所以无法提供更进一步的参考信息。

Q: 超滤装置是否可以用于高压灭菌?

A: 不可以。

Q: 是否提供无热源的超滤装置?

A: 我们提供的超滤装置均非无热源的,即使是无菌装置也可能包含热源。

Q: 超滤离心管是否不含RNA酶?

A: 我们不保证超滤离心管不包含RNA酶,建议您可以用0.1% DEPC在37度浸泡2小时,以完全灭活RNA酶。残留的DEPC可以用超纯水洗涤除去。

Q: 说明书中推荐在室温下进行离心,考虑到蛋白的稳定性,我是否可以在4℃进行离心?

A: 可以,但是低温会增加蛋白样品的粘性,导致流速减慢,建议可将离心时间延长到原来的 1.5倍。

Q: 如何对超滤离心管进行去除内毒素的处理?

A: 我们提供的超滤离心管是没有经过去内毒素处理的,同时由于内毒素通常以多聚体的形式存在, 大小在10-1000kDa之间不等,在超滤的过程中是无法去除的。

Part Ⅳ:结果分析

Q: 用超滤离心管去除去污剂是有什么需要注意的吗?

A: 去污剂因其独特的性质,当浓度大于临界微团浓度(Critical Micelle Concentration, CMC)时,去污剂分子会聚集形成微团分子而改变分子构象,这有可能会影响去污剂的去除效果

Q: 我的蛋白在浓缩时出现了沉淀为什么?

A: 蛋白如果浓缩过快或者过度浓缩都有可能引起蛋白沉淀。我们建议蛋白浓缩后的最终浓度不超过20mg/ml. 对于对浓缩速度敏感而容易沉淀的蛋白,我们建议的改进方法是:

1离心力降为推荐离心力的30%-50%。 

2改选择下一级过滤装置(如原本选用10kDa,此时可以选择30kDa) 3在浓缩过程中,取出超滤离心管,用枪头反复吹吸几次。

Q: 浓缩后我发现浓缩液中没有目的蛋白,可能的原因是?

A: 首先,超滤离心管的最低起始蛋白浓度为25ug/ml. 请确保您的样本的起始浓度大于这个浓度。 其次,如果问题仍然出现。请不要丢弃您的样本滤过液,以做下一步分析:

1如果您的样本在滤过液中,那么请排查:

  • 您是否选择了合适截留分子量的超滤离心管(目的蛋白分子量的1/2或者1/3)?
  • 使用的离心力是否是在最高范围内?如果您使用的是rpm,需根据离心半径,换算成相应离心力离心机最近是否有校准过?
  • 您是否首次尝试这个蛋白?如果能确保你用同样的超滤离心管对其他蛋白成功操作的话, 那么有可能是您的目的蛋白的原因。有时蛋白会因其本身的一些特性(构象差异)而影响浓缩效果,建议选用上一分子量级别的超滤离心管(如原本选用30kDa,此时可以选择 10kDa)。

2如果您的样本也不在滤过液中:

  • 您的样本起始蛋白浓度是否大于25ug/mL?
  • 您用来确定样本浓度的方法是什么?是否可信?
  • 您的目的蛋白是不是沉淀了?如果是,具体解决方法请参考上面的关于蛋白沉淀的 FAQ


Q: 我用浓缩后的蛋白做下游分析时发现有干扰,可能原因?

A: 超滤离心管中的超滤膜含有微量甘油。如果此材料干扰分析,可用缓冲液或超纯水预清洗。如果干扰仍然存在,用0.1 mol/L NaOH清洗,然后用缓冲液或超纯水再次清洗后甩干

Q: 有时候我用超滤离心管连水都离不下来,可能原因?

A: 超滤离心管中的超滤膜含有微量甘油。如果出现这种情况,先用0.1 mol/L NaOH清洗再离心。最后用缓冲液或超纯水再次清洗后甩干。清洗后的滤膜应立即使用, 如暂时不用,请保持润湿状态,避免重新干燥。

Q: 使用超滤离心管对蛋白进行浓缩的过程中怀疑目的蛋白和膜之间可能存在非特异性吸附,如何 改善这一现象?

A: 超滤离心管使用的是PES膜材质,拥有低蛋白吸附能力。但是对于一些疏水性蛋 白或非极性蛋白,它们和膜的非特异吸附可能会增强,对于这种情况,客户可以尝试在实验 前对超滤离心管进行封闭处理,详细步骤可联系技术支持。

同时也可建议客户通过减小膜面积来降低非特异性吸附。







说明书下载

LeanV 超滤离心管
货号:LV05 | LV4 | LV15
LeanV 超滤离心管可快速高效实现生物样本的浓缩与纯化,过滤孔径为10kd 30kd 50kd 100kd, 目前有 0.5mL、4mL和15mL三种规格可提供。独特的竖式设计及最大化过滤面积能提供快速的样本处理和较高的样本回收率(通常大于 90%稀薄的初始溶液),同时保持温和的浓缩环境以保持蛋白的活性和构象。竖式设计将溶质极化和之后造成的滤膜结垢降至最低,过滤装置中的物理止滤点防止过滤器旋转过度使样本干燥和造成样本损失,其中0.5mL超滤离心管通过反向旋转快捷操作高效稳定回收浓缩样品。超滤离心管采用了PES膜,该膜的蛋白质和核酸结合率非常低。
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